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植物无病毒材料的保存技巧

时间:2023-05-15 理论教育 版权反馈
【摘要】:但植物无病毒材料并不是具有额外的抗病特异性,如果它们的后续培养不当仍有可能被重新感染病毒,成为带毒材料。不同植物物种、品种对培养温度的反应差异较大,低温保存无病毒材料时,要根据各自物种品种的生物学特性设置不同的保存温度。此法只对部分植物有效,常适用于高度脱水的无病毒材料。

植物无病毒材料的保存技巧

一、植物无病毒材料的保存

脱毒获得的植物材料,经反复鉴定确系无病毒材料,可作为无病毒原种材料进行扩繁。但植物无病毒材料并不是具有额外的抗病特异性,如果它们的后续培养不当仍有可能被重新感染病毒,成为带毒材料。所以通常将脱毒获得的植物无病毒原种材料,进行隔离保存和繁育。

(一)隔离栽培保存

通常,较大的无病毒苗可直接种植在300目以上网纱的防虫温室内,以防止蚜虫、叶蝉等病虫传媒的进入。栽培用的土壤也应进行消毒,周围的生长环境也要整洁、通风、透光,栽植期间及时做好农、肥、水管理工作,并适时喷施农药预防病虫害的发生,以保证无毒苗在与病毒充分隔离的条件下生长繁殖。

(二)离体保存

较小的无病毒材料,可利用植物组织培养技术进行材料的保存或扩繁,这就是通常讲的离体保存技术。离体保存方法,按保存的温度不同,可分为常温保存、低温保存和超低温保存,其中,低温保存和超低温保存为常用。

1.低温保存(缓慢生长保存)

将无病毒原种材料的器官或幼小植株接种到培养基上,通过降低培养温度等环境条件,使培养物在低温条件下生长降低到最低限度,又不至于死亡,达到长期保持的目的,这种保存方式被称为低温保存,又叫缓慢生长保存法、最小生长法。该方法只需半年或一年更换一次培养基,是中长期保存无病毒材料及其他优良种质的一种简单、有效且安全的手段。

不同植物物种、品种对培养温度的反应差异较大,低温保存无病毒材料时,要根据各自物种品种的生物学特性设置不同的保存温度。一般情况下,温带植物多在0~4℃温度条件保存较好,热带植物多在15~20℃温度条件保存较好。

2.超低温保存(冷冻保存)

超低温保存的理论依据是:在超低温条件下,植物保存材料组织细胞结冰速度很快,没来得及形成冰晶而迅速转化成玻璃化状态,有效避免了细胞内结冰所导致植物组织细胞的死亡。超低温保存是通常利用液态氮LN(-196℃)离体保存植物种质材料,是长期保存植物无病毒材料及优良种质的一种有效手段。植物材料进行超低温保存时,一般要经过材料的选择、材料的预培养、冷冻保护、冷冻、保存、解冻、再培养等七个阶段。

(1)材料选择

用于超低温保存的植物脱毒材料的细胞形态、生理状况极显著影响着超低温离体保存的成败。一般情况下,保存时宜选择无病毒、细胞小、胞质浓、无液泡、抗冻性强的分生组织细胞材料,如茎尖生长点、组培过程中新产生的不定芽生长点、愈伤组织等具有旺盛分生能力的分生性组织细胞。胞质相对较稀、高度液泡化的细胞超低温时容易产生胞内冰晶而损伤细胞组织结构,导致死亡。

另外,超低温保存前要能大致确定冷冻材料的体积,一般冷冻材料的体积宜控制在0.2~10ml范围内。如果材料体积过大,不利于均匀冷冻和后期的解冻处理;体积过小,又难保证再培养时材料有足够的再生活力。

(2)材料预培养

在预培养的培养基中加入脯氨酸、甘露醇、山梨醇等渗透剂,可减少材料细胞内自由水的含量,提高保存材料的抗冻性。(www.xing528.com)

(3)冷冻保护

材料冷冻前添加冷冻保护剂处理,有助于材料在冰冻前期细胞进行保护性脱水,降低冰点和水的饱和点,进一步阻止冰晶的形成,减少冷冻伤害。常用冷冻保护剂有二甲亚砜DMSO(5~8%)、甘油、脯氨酸(10%)、聚乙二醇6000(10%)、各种可溶性糖等,其中二甲亚砜DMSO最常用。

方法:取出预培养材料适当干燥处理,转入盛有液体培养基的无菌培养皿,然后在0℃条件下逐渐加入冷冻保护剂(30~60min内添加冷冻保护剂量至原有材料组织体积的3倍左右),使保护剂逐步渗透到材料中。

(4)冷冻

加冷冻液,加好后保持10min,吸去冷冻液,将材料转入事先装有1ml左右冷冻液的无菌小冻存瓶中。然后选择不同的冷冻方法进行冷冻。

①快速冷冻法。将0℃或是预处理过的材料直接投入液氮中,使材料所含的水分还没来得及形成冰晶就已迅速转化成玻璃化状态。此法只对部分植物有效,常适用于高度脱水的无病毒材料。

②慢速冷冻法。需要借助程序降温器,使保存材料以0.1~4℃·min-1降温速度降到-100℃后再转入液氮。此法常适用于悬浮培养的植物细胞和愈伤组织。

③逐级冷冻法。先以每分钟下降5~6℃·min-1的降温速度,使材料冷却到-50~-30℃,在此温度下预冻一段时间(通常为30min左右)后,再转入液氮中迅速降温。此法常适用于植物茎尖材料的离体保存。

(5)保存

在离体保存过程中,应注意液氮量的变化,不断地及时补充液氮,避免保存温度上升到-130℃以上,才能确保保存材料能长期离体保存。

(6)解冻

通常的解冻方法是将保存材料从-196℃的液氮中取出后,投入37~40℃温水中,轻轻振动使之快速解冻(解冻速度达500~750℃·min-1时,解冻较为理想),使材料迅速通过冰晶温度生长区(-60~-40℃),避免温度缓慢上升过程中材料组织细胞内结冰而受伤害。

另外,值得注意的是,如果离体保存材料的冷冻管是特殊塑料制成的,解冻所用的温水温度可稍高些,可达60℃左右;如果离体保存材料的冷冻管是玻璃管,解冻的水温则应相对低些。

(7)再培养

解冻的离体保存材料体内残留的部分冷冻保护剂,对细胞的恢复生长有一定毒害作用,所以在材料再培养前有必要清洗去除。常用再培养液体配方逐步添加到解冻的冷冻液中冲洗材料,使材料中的冷冻保护剂浓度明显下降,最后将材料转入新鲜的固体培养基中进行诱导再培养,使材料逐渐恢复生长。

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