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如何用黏度法测定纤维素酶活力?

时间:2023-06-19 理论教育 版权反馈
【摘要】:1g固体酶,在℃、指定pH条件下,水解羧甲基纤维素钠底物,使底物黏度降低而得到的相对于标准品的纤维素酶相对酶活力。黏度的降低与内切纤维素酶活力成正比。③ 羧甲基纤维素钠:BLANOSE 7LF,在25℃,取代度65%~90%,2%水溶液的黏度为20~50mPa·s。使用前应校正pH至相应的范围。标准酶使用溶液的浓度可以根据标准酶进行调整。每个试管操作间隔应以秒表准确控制,保持间隔时间相同,按放入顺序依次取出试管,迅速插入振荡黏度计,读数。

如何用黏度法测定纤维素酶活力?

1g固体酶(或1mL液体酶),在(40±0.1)℃、指定pH条件下(酸性纤维素酶pH6.0,中性纤维素酶pH7.5),水解羧甲基纤维素钠底物,使底物黏度降低而得到的相对于标准品的纤维素酶相对酶活力。黏度的降低与内切纤维素酶活力成正比。为与采用相同底物的CMCA-DNS法区分,该法可简写为CMCA-VIS(VIS表示viscosity)。

1.实验试剂及仪器

磷酸缓冲液,0.1mol/L pH6.0(适用于酸性纤维素酶):同滤纸酶活力。

② 磷酸缓冲液,0.1mol/L pH7.5(适用于中性纤维素酶):分别称取22.49g一水磷酸二氢钠、148.98g二水磷酸氢二钠和PEG6000(聚乙二醇)10.0g,将其溶解在10L去离子水中。调解溶液的pH到(7.5±0.05)备用。溶液在室温下可保存一个月。

③ 羧甲基纤维素钠:BLANOSE 7LF(Hercules Incorporated),在25℃,取代度65%~90%,2%水溶液的黏度为20~50mPa·s。

④ CMC-Na溶液:称取35g CMC-Na,精确至1mg,缓慢加入约700mL相应的缓冲液,加热至80~90℃,边加热边磁力搅拌,直至CMC-Na全部溶解,冷却后用相应的缓冲液稀释至950mL,用2mol/L盐酸或者氢氧化钠调节溶液的pH到(6.0±0.05)(酸性纤维素酶)或(7.5±0.05)(中性纤维素酶),最后定容到1000mL,搅拌均匀,贮存于冰箱中备用。在冰箱中的贮存使用期最长为3d。使用前应校正pH至相应的范围。

⑤ 标准酶:酸性或中性。

⑥ a.振荡黏度计,MIVI 8004(Safraser,France)或同等分析效果的仪器;b.恒温水浴(50±0.1)℃;c.漩涡混合器;d.10mL塑料试管(100mm×13mm);e.高精度自动分配器;f.秒表

2.实验步骤

(1)黏度计的校准

使用标准黏度样品校准黏度计。100mPa·s,数值显示在(1800±50)mV;10mPa·s,数值显示在(750±10)mV。

(2)绘制标准曲线

称取一定量的酸性或中性标准酶,用相应的缓冲溶液溶解,作为标准贮备液。然后将贮备液梯度按表9-2或表9-3稀释到最终浓度作为酶标准使用溶液备用。酶标准贮备液和使用溶液每日应重新配置。标准酶使用溶液的浓度可以根据标准酶进行调整。

表9-2 酸性纤维素酶标准曲线

表9-3 中性纤维素酶标准曲线

(3)标准对照酶样的制备

称取一定量的标准对照酶样,精确至1mg,用与溶解相应标准酶同样的缓冲液溶解。标准对照酶样溶液的浓度,应根据配置的酶标准使用溶液的浓度范围进行调整,使稀释后对照样的酶活恰好落在标准曲线的中部。

(4)待测酶液的准备(www.xing528.com)

称取少量酶样,用相应的缓冲液溶解,磁力搅拌15min,并稀释到一定体积,使稀释后样液的酶活恰好落在标准曲线的中部。

(5)样品的测定

取若干支专用试管。按表9-4规定,分别吸取各种溶液于各管中(每种样液平行作3个)。每个试管操作间隔应以秒表准确控制,保持间隔时间相同,按放入顺序依次取出试管,迅速插入振荡黏度计(插入时黏度计切忌碰试管壁),读数。

表9-4 试验步骤

注:①每做完一个样,振荡棒要擦拭干净。②严格控制时间间隔。

3.结果计算

(1)标准曲线的绘制

以酶标准使用溶液的酶活力为横坐标,以读取的黏度计读数为纵坐标,绘制标准曲线,获得线性回归方程,线性回归系数大于0.9975以上时方可使用(否则须重做)。

(2)CMCA-VIS酶活力计算

CMCA-VIS酶活力按式(9-5)计算:

式中 X1——羧甲基纤维素(黏度法)酶活力,U/g(或U/mL)

X0——通过标准曲线查得或计算出的酶活力,U/g(或U/mL)

V——容量瓶的体积,mL

n——进一步稀释的倍数

m——称取(或吸收)样品的量,mL(或g)

同一试样两次测试结果的绝对差值,不得超过算术平均值的10%。

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