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生物源拮抗物质提取与应用:SephadexG-100层析结果

时间:2023-12-07 百科知识 版权反馈
【摘要】:把SepHadexG-100凝胶层析后的活性组分和标准蛋白质放入一倍体积的样品缓冲液并在沸水中加热3min,用微量进样器加样20uL,电泳结束后,经凝胶成像系统观察检测,结果如图5-7所示:Sephadex G-100柱层析后的峰Ⅱ浓缩透析后经SDS-PAGE分析,在标准分子量14.4~43.0,在38.0kD位置上有一个蛋白条带特别明显,比牛血清蛋白分子量小,这与FPLC分析结果相吻合,所以表明该蛋白已基本纯化。

生物源拮抗物质提取与应用:SephadexG-100层析结果

试验结果如图5-1所示。拮抗菌B-FS01菌体的发酵液、无菌滤液、抗菌蛋白粗提液都有拮抗活性,而只有去蛋白上清液没有活性。这说明拮抗活性物质已被(NH42SO4沉淀下来,并逐级推断说明:滤液中的蛋白在起拮抗作用。

图5-1拮抗物提取过程中各溶液的拮抗活性
A—菌体发酵液;B—无菌滤液;C—滤液中蛋白粗提液;D—去蛋白上清液

最佳(NH42SO4饱和度的确定如图5-2所示。不同饱和度的拮抗蛋白均有抑菌活性,30%饱和度拮抗蛋白抑菌活性最低,70%饱和度拮抗蛋白抑菌活性最高,以后活性逐渐下降。由此可以确定提取拮抗蛋白最佳硫酸铵的饱和度为70%。

图5-2 (NH42SO4饱和度对提取拮抗蛋白及活性的影响

用70%饱和度的拮抗蛋白提取液和牛血清蛋白,分别点样电泳。经凝胶成像系统观察检测,结果如图5-3所示:拮抗蛋白粗提液有多条电泳条带,表明其由多个蛋白成分组成。牛血清蛋白表现出一个条带。

图5-370%饱和度的拮抗蛋白PAGE电泳
A—70%饱和度的拮抗蛋白;B—牛血清蛋白

如图5-4所示,把70%饱和度提取的拮抗蛋白粗提液和牛血清蛋白分别涂在相同条件的FPLC Superose-12 HR10/30柱上,得到各自的吸收峰。经比较发现,牛血清蛋白(Ⅰ)的吸收峰在洗脱体积为12.976mL时出现,拮抗蛋白粗提液(Ⅱ)的吸收峰在洗脱体积为18.618mL时出现。这说明拮抗蛋白的分子量比牛血清蛋白小。

图5-4 70%饱和度的拮抗蛋白经FPLC Superose-12 HR10/30柱的色谱
Ⅰ—牛血清蛋白;Ⅱ—B-FS01的拮抗蛋白粗提液

用紫外分光光度计测量洗脱液的光吸收值,用石英比色皿,在280nm处比色,以磷酸缓冲液(0.02mol/L,pH值为8.0)为空白对照。调零,按编号的刻度试管分别测定经过DEAE5 2纤维素柱洗脱的各管洗脱液的光吸收值,记录为A280。以A280纵坐标,以洗脱液管号为横坐标,绘制洗脱曲线(如图5-5所示)。

图5-5 抗菌活性物质DEAE52纤维素柱层析

菌株B-FS01的70%饱和度硫酸铵盐析提取的拮抗蛋白,经过DEAE52纤维素柱洗脱后,出现2个洗脱峰。通过以烟草赤星病菌为指示菌,用对峙打孔法测活力,发现峰I活性最高。

洗脱结果如图5-6所示。

图5-6 抗菌活性物质Sephadex G-100柱层析

从图5-6可以看出:DEAE52纤维素柱层析后的活性峰Ⅰ组分,再经过SepHadexG-100凝胶层析,分离得到3个活性峰。其中,有一个较大的活性峰Ⅱ。以烟草赤星病菌为指示菌进行检测,峰Ⅱ有很强的抑菌活性,而峰Ⅰ活性很弱。以峰Ⅱ活性最大与最小一半处为上下限,合并收集峰Ⅱ,浓缩后透析,在冰箱4℃内保存,以备进一步电泳检测用。

把SepHadexG-100凝胶层析后的活性组分和标准蛋白质(中等分子量14.4~97.4kD)放入一倍体积的样品缓冲液并在沸水中加热3min,用微量进样器加样20uL,电泳结束后,经凝胶成像系统观察检测,结果如图5-7所示:Sephadex G-100柱层析后的峰Ⅱ浓缩透析后经SDS-PAGE分析,在标准分子量14.4~43.0,在38.0kD位置上有一个蛋白条带特别明显,比牛血清蛋白(66.2kDa)分子量小,这与FPLC分析结果相吻合,所以表明该蛋白已基本纯化。(www.xing528.com)

图5-7 拮抗蛋白粗提液SDS-PAGE凝胶电泳
M—标准蛋白质;1—拮抗蛋白粗提液

由电泳图谱可以看出,经过DEAE52纤维素柱层析和SepHadexG-100凝胶层析后,拮抗蛋白已基本得到纯化。

以烟草赤星病菌为指示菌,用对峙打孔法测定活性。结果如图5-8所示。

图5-8 温度对拮抗蛋白活性的影响

由图5-8可知,纯化的拮抗蛋白即使经过120℃处理30min,活性也只下降了16%(假设30℃时的活性为100%)。可见,此抗真菌蛋白有很好的热稳定性

以烟草赤星病菌为指示菌,用对峙打孔法测定活性。结果如图5-9所示。

图5-9 pH值对拮抗蛋白活性的影响

由图5-9可知,纯化的拮抗蛋白在不同的pH值条件下,均具有活性,在pH值为6~7时活性最大。随着pH值减小,拮抗活性下降,并且在碱性条件下活性下降趋势缓慢。乳酸或NaOH溶液对照未表现出抑菌现象。由此可见,拮抗蛋白对酸的敏感性要强于碱。

经活性检测,纯化的拮抗蛋白对胃蛋白酶不敏感,对蛋白酶K部分敏感,而蛋白酶K和胃蛋白酶对照未表现出拮抗活性。

结果如图5-10所示。拮抗蛋白显著抑制孢子萌发。

图5-10 纯化的拮抗蛋白对小麦赤霉菌孢子萌发的抑制作用
A—处理;B—对照

结果如图5-11所示。结果处理中的小麦赤霉菌菌丝变形,生长缓慢,并且菌丝溢缩,逐渐溶解。

图5-11 纯化的拮抗蛋白对小麦赤霉菌菌丝生长的抑制作用
A—对照;B—处理

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